Izolace RNA z živočišné tkáně

Slides:



Advertisements
Podobné prezentace
OPAKOVÁNÍ Př. Měděný drát má při teplotě 30°C délku 150 m. Určete jeho délku při teplotě 80°C. Tabulky - Součinitel teplotní roztažnosti mědi - 1,7.10-5K-1.
Advertisements

INVESTICE DO ROZVOJE VZDĚLÁVÁNÍ
Dostupné z Metodického portálu ISSN: , financovaného z ESF a státního rozpočtu ČR. Provozováno Výzkumným ústavem pedagogickým v Praze.
SUPERACRYL PLUS DURACRYL PLUS
Zkoušení asfaltových směsí
Bytové družstvo U Arény
VY_32_INOVACE_09-15 Střídavý proud Test.
ATOMIZACE KAPALIN ULTRAZVUKEM A JEJÍ VYUŽITÍ PŘI SÍŤOVÁNÍ NANOVLÁKEN
Degradační procesy Magnetické vlastnosti materiálů přehled č.1
Laboratorní kontrola antikoagulační léčby
Povrchový gykoprotein Lipidová membrána Virová (HIV) nukleová kyselina integrasa Kapsida (obal nuleové kyseliny) matrix Automatická izolace HIV(nukleové.
Převody jednotek délky objemu hmotnosti času
SINOVÁ VĚTA PRO III. ROČNÍK SOU Poznámky pro žáky se SPU DOC PDF
řešené soustavou rovnic
Kvantitativní RT-PCR Praha
výpočet pH kyselin a zásad
Násobíme . 4 = = . 4 = = . 4 = = . 2 = 9 .
5. DĚLENÍ LÁTEK MEMBRÁNOU
4. CENTRIFUGACE Podmínka dělení: l ≥ 1 suspenze  emulze
Změny přenosu a uvolňování dýchacích plynů za fyzické práce K. Barták Ústav tělovýchovného lékařství LF a FN, Hradec králové.
Násobení a dělení čísel 10, 100 a jejich násobků
GENETICKÁ TRANSFORMACE BAKTERIÍ
Mapa zájmu - plány.
TOKOLÝZA a předčasný porod
Histologické zpracování trepanobiopsií na Ústavu patologie FN Olomouc
Pojistné systémy 7. cvičení. Opakování Urči JNP, které musí zaplatit 45letý klient, chce-li si zajistit roční důchod Kč vyplácený na konci roku,
Organické a anorganické sloučeniny lidského těla
v programu MS PowerPoint
Hmotnostní zlomek převáděný na %
Gymnázium a obchodní akademie Chodov Smetanova 738, Chodov Číslo projektu: CZ.1.07/1.5.00/ Šablona: III/2 Inovace a zkvalitnění výuky prostřednictvím.
Cvičná hodnotící prezentace Hodnocení vybraného projektu 1.
Laboratorní pomůcky a zařízení
Dřeň nadledvin - katecholaminy
Pohony posuvných bran Praha Rozdělení  Podle instalace a počtu cyklů  Pohony pro privátní instalace  Pohony pro středně velký počet cyklů  Pohony.
Měření objemu pevného tělesa
Porovnání různých metod léčby akustického traumatu
Poměr - opakování Zapisuj nové pojmy.
DNA-Fingerprint1 Testování produktů elektroforézou v agarózovém gelu.
Odběr a uchování biologického materiálu pro stanovení mRNA
Norský model Rozvoj aerobních schopností. Organizace - principy.
Tuky = Lipidy Přírodní látky
odměrná analýza – volumetrie
Katedra biologických a biochemických věd FCHT, Univerzita Pardubice
složení roztoků, hmotnostní zlomek, procentová koncentrace
Experiment: Test na přítomnost patogenu ve vodě z mytí brambor pomocí PCR.
Studium aktinu, mikrofilamentární složky cytoskeletu pomocí dvou metod:
Marie Černá, Markéta Čimburová, Marianna Romžová
ELISA, určení ideálních koncentrací reaktantů -různé varianty
Chemické výpočty II Vladimíra Kvasnicová.
OSMOTICKÁ FRAGILITA ERYTROCYTŮ.
Analýza a separace nukleových kyselin
Test aktivity lymfocytů
Mária Ol’hová, Veronika Frkalová, Petra Feberová
Metody používané v biochemii (centrifugace, elektroforéza, dialýza)
Bezpečnost práce při praktických cvičeních z MB
Moderní metody buněčné biologie
V praktiku budou řešeny dvě úlohy:
Enzymová aktivita Kinetika podle Michaelise a Mentenové E + SESE + P Jednotky enzymové aktivity KATAL (kat) 1 katal = 1 mol přeměnéného substrátu (event.
Immunoprecipitace Praktická práce – část I.. Protokol k experimentu Protokol.
Příprava vzorků – odběr vzorků, uchování vzorků a izolace
© Biochemický ústav LF MU (E.T.) 2012
Měření schopnosti kvasinek flokulovat Doplnění laboratorního cvičení z Fyziologie bakterií Řešitelé: Kopecká Jana, Sedláček Ivo, Balážová Tereza.
Provedení DNA – otisků prstů
Centrifugace.
© Biochemický ústav LF MU (E.T.) 2009
Izolace genomové DNA Základní kroky: Biologický materiál:
Výroba a degradace PLA 1.
Mgr. Petra Straková Podzim 2014
SDS-PAGE Protokol experimentu
Vertikální elektroforéza v polyakrylamidovém gelu PAGE
Transkript prezentace:

Izolace RNA z živočišné tkáně MUDr. Michal Jurajda ÚPF LF MU

Zdroj RNA Čerstvá tkáň živočišného původu Slezina, játra, ledviny laboratorního potkana

Uchování a transport biol. materiálu Ihned po odběru bude následovat izolace zahájená homogenizací a lýzou vzorku. Lyzační pufr blokuje RNA-ázy. Některé postupy doporučují uchovávat lyzáty pro pozdější izolaci.

Charakter zpracovávaných tkání Buněčnost – u jater, sleziny i ledvin vysoká – max. 25μg na jednu kolonku Přítomnost lipidů – nízká Charakter extracelulární matrix – snadno mechanicky rozrušitelná

Homogenizace tkání Použijeme rotor stator homogenizátor

Izolace nukleových kyselin Použijeme RNeasy kit fy QIAGEN

Kolonky Qiagen buněčný lyzát centrifugace promytí a uvolnění

Izolační kolonky

1,5% agaróza vTBE Izolace RNA 28S 18S

Spektrofotometrické stanovení Kyveta z křemičitého skla (quartz, silica) A260 – absorbance vlastní NA A230 – absorbance složek pufru (Tris, EDTA) A280 – absorbance fenolu a proteinů (fenylalanin a tyrosin) A320 – absorbance pozadí, NA ani proteiny neabsorbují.

Odstranění RNA-áz DEPC diethyl pyrocarbonate Karcinogen Deaktivovatelný při 100 st.C http://www.ambion.com/techlib/tb/tb_178.html

Vlastní postup Před prvním použitím nachystat roztoky. Přidat čistý 96-100% ethanol k RPE pufru Přidat β-merkaptoethanol k RLT pufru v poměru 10 μl na 1 ml pufru. Pozor po smíchání zůstává stabilní pouze 1 měsíc.

Vložit vzorek tkáně (20-25 μg) do 1,5 nebo 2 ml eppendorfky a přidat 600 μl RLT pufru. Okamžitě homogenizovat pomocí rotor stator homogenizátoru. Centrifugovat 3 minuty při maximálních otáčkách a supernatant přenést do nové zkumavky.

Přidat stejný objem 70% ethanolu a promíchat opakovaným nasátím pipetou. 700 μl vzorku přenést na kolonku vloženou do sběrací zkumavky. Centrifugovat 15s při minimálně 8000g. Vylít roztok, který protekl kolonkou a opětovně použít sběrací zkumavku. Možno nanést zbytek vzorku (max. 700 μl na jednu centrifugaci) a zopakovat postup Nanést na kolonku 700 μl pufru RW1 Centrifugovat 15s při minimálně 8000g. Vylít roztok, který protekl kolonkou a opětovně použít sběrací zkumavku.

Přidat na kolonku 500 μl RPE pufru Přidat na kolonku 500 μl RPE pufru. Centrifugovat 15s při minimálně 8000g. Vylít roztok, který protekl kolonkou a opětovně použít sběrací zkumavku. Přidat na kolonku 500 μl RPE pufru. Centrifugovat 2 min. při minimálně 8000g. Vylít roztok, který protekl kolonkou a vyměnit sběrací zkumavku. Centrifugovat 1 min. při minimálně 8000g s čistou sběrací zkumavkou-snaha odstranit veškerý ethanol. Kolonku vložit do 1,5 ml zkumavky. Nanést 50 μl RNase free water na střed membrány a centrifugovat 1 min. při minimálně 8000g. Při očekávaném výtěžku vyšším než 30 μg možno eluci zopakovat. Část eluátu nanést na agarové ELFO, část změřit na spektrofotometru. RNA uskladnit při -80 °C.