Izolace genomové DNA Základní kroky: Biologický materiál:

Slides:



Advertisements
Podobné prezentace
Imobilizace a stabilizace enzymů.
Advertisements

Analýza proteinů SDS PAGE elektroforézou
IZOLACE A CHARAKTERIZACE PROTEINŮ
Kvantitativní RT-PCR Praha
5. DĚLENÍ LÁTEK MEMBRÁNOU
4. CENTRIFUGACE Podmínka dělení: l ≥ 1 suspenze  emulze
Metodika přípravy medií obecně 1/ Příprava zásobních roztoků RR (1mg - 1  mol - 1 ml) makroelementy (10x) - kromě Ca mikroelementy (100x), příp. 2x ředit.
Chemická stavba buněk Září 2009.
Laboratorní pomůcky a zařízení
Praktikum - mikrobiologie
Základy přírodních věd
Separační metody.
Biofyzika buňky, biomembrány
Biochemické metody separace proteinů
Suspenzní kultury.
Technika dávkování s elektronickou pipetou. Elektronická pipeta Elektronická pipeta s dobíjecím stojánkem.
DNA-Fingerprint1 Testování produktů elektroforézou v agarózovém gelu.
Odběr a uchování biologického materiálu pro stanovení mRNA
Izolace RNA z živočišné tkáně
Udávání hmotností a počtu částic v chemii
Katedra biologických a biochemických věd FCHT, Univerzita Pardubice
Udávání hmotností a počtu částic v chemii
Praktické cvičení č. 3 ZÁKLADY GENOVÉHO INŽENÝRSTVÍ Klonování PCR produktu do vektoru PCR®2.1-TOPO® a transformace do E. coli AMOLc Úvod do molekulární.
(genové mutace, otcovství, příbuznost orgánů při transplantacích) RNA
Drtič.
Experiment: Test na přítomnost patogenu ve vodě z mytí brambor pomocí PCR.
Protokol č. Vyšetření slin na přítomnost antigenů krevních skupin
Základní struktura živých organismů
Studium aktinu, mikrofilamentární složky cytoskeletu pomocí dvou metod:
Marie Černá, Markéta Čimburová, Marianna Romžová
OSMOTICKÁ FRAGILITA ERYTROCYTŮ.
Analýza a separace nukleových kyselin
SPECIFIKA ANALÝZY BAKTERIÁLNÍCH SPOLEČENSTEV SEDIMENTŮ POMOCÍ MOLEKULÁRNÍCH DETEKČNÍCH METOD UNIVERZITA PALACKÉHO V OLOMOUCI Katedra ekologie a životního.
BUNĚČNÁ STAVBA ŽIVÝCH ORGANISMŮ
DNA diagnostika II..
Transformace 1 - KLONOVÁNÍ
Test aktivity lymfocytů
Mária Ol’hová, Veronika Frkalová, Petra Feberová
Metody používané v biochemii (centrifugace, elektroforéza, dialýza)
Bezpečnost práce při praktických cvičeních z MB
Moderní metody buněčné biologie
Antibiogram bakteriálního kmene
V praktiku budou řešeny dvě úlohy:
Zlepšování podmínek pro výuku technických oborů a řemesel Švehlovy střední školy polytechnické Prostějov registrační číslo : CZ.1.07/1.1.26/
Zlepšování podmínek pro výuku technických oborů a řemesel Švehlovy střední školy polytechnické Prostějov registrační číslo : CZ.1.07/1.1.26/
Enzymová aktivita Kinetika podle Michaelise a Mentenové E + SESE + P Jednotky enzymové aktivity KATAL (kat) 1 katal = 1 mol přeměnéného substrátu (event.
Immunoprecipitace Praktická práce – část I.. Protokol k experimentu Protokol.
1 Metody molekulární biologie ve forenzní genetice Jana Vlasáková.
Zlepšování podmínek pro výuku technických oborů a řemesel Švehlovy střední školy polytechnické Prostějov registrační číslo : CZ.1.07/1.1.26/
Vakuola a osmotické jevy
Manipulace s DNA Manipulace s proteiny Analýza genové exprese
Čištění GFP z lyzátu E.coli pomocí sloupcové chromatografie
qRT-PCR Kryostat Mgr. Jiřina Medalová, Ph.D. Mgr. Martina Lánová RNDr. Josef Večeřa, Ph.D. Bc.
Měření schopnosti kvasinek flokulovat Doplnění laboratorního cvičení z Fyziologie bakterií Řešitelé: Kopecká Jana, Sedláček Ivo, Balážová Tereza.
Lékařská mikrobiologie I Růst bakterií, růstová křivka
4. CENTRIFUGACE Podmínka dělení: l ≥ 1 suspenze  emulze
Provedení DNA – otisků prstů
Buňka  organismy Látkové složení.
Cytologie a morfologie bakterií - cvičení
Poškození DNA vlivem ionizujícího záření
Centrifugace.
Číslo projektu CZ.1.07/1.5.00/ Číslo materiálu
Výroba a degradace PLA 1.
5. DĚLENÍ LÁTEK MEMBRÁNOU
C7900 Lehká biotechnologie
Mgr. Petra Straková Podzim 2014
SDS-PAGE Protokol experimentu
Buněčný cyklus buněčný cyklus (generační doba) - doba mezi dvěma mitózami (rozdělení buňky na dvě dceřinné) - velmi variabilní, podle typu tkáně.
Nativní preparát, vitální barvení
Eukaryotní buňka Marcela Petrová 3.B
Transkript prezentace:

Izolace genomové DNA Základní kroky: Biologický materiál: Růst kultury, buněk, odebrání tkáně,.. Lyze buněčných stěn a organel Odstranění proteinů, polysacharidů, RNA, zbytků membrán DNA recovery - Vysrážení DNA - Rozpuštění DNA Biologický materiál: myší buněčná linie prsního karcinomu 4T1

Postup - příprava materiálu Buněčnou kulturu necháme růst na Petriho misce ve vhodném médiu do konfluence 60-80% 2. Kultivační medium odlijeme, buněčnou kulturu opatrně opláchneme 1ml 1xPBS, odlijeme do odpadní nádoby Přelijeme 1ml roztoku 1mM EDTA v 1xPBS, 4 minuty inkubujeme při pokojové teplotě Buňky oddělíme od podkladu mechanicky opakovaným oplachem proudem tekutiny pomocí pipety Suspenzi odlepených buněk přeneseme do čisté 1,5ml zkumavky Buňky centrifugujeme 400g/5 min/4 °C Supernatant pečlivě odpipetujeme

Postup – lyze buněk Pelet buněk suspendujeme ve 400µl pufru A (0,4 M NaCl, 10 mM Tris–HCl pH=8, 2 mM EDTA) Přidáme: 10 µl RNAzy (výsledná koncentrace 100 ug/ml) 80 µl 10% SDS 8 µl proteinázy K (zásobní roztok 20 mg/ml) Opatrně promícháme a inkubujeme 1 hod při 55 °C.

Postup – vysrážení a odstranění proteinů Přidáme 360 µl 5M NaCl promícháme převracením centrifugujeme 12,000 RPM/10 min/4 °C supernatant přeneseme do čisté mikrocentrifugační zkumavky !! Použijeme špičku s odstřiženým koncem!!

Postup – vysrážení a rozpuštění DNA přidáme stejný objem vychlazeného izopropanolu (360 µl) promícháme převracením dokud se nevysráží vlákno genomové DNA Centrifugujeme při 12 000 RPM/10 min/4 °C. Opláchneme sediment 1ml 70% etanolu, inkubujeme 5 minut. Odstraníme roztok etanolu, sediment osušíme a rozpustíme v 50 µl TE pufru. Změříme koncentraci a čistotu na Nanodropu.

Homogenizace tkání a lyze buněk Detergent Var Sonikace (ultrazvuk) Opakované rychlé zamražení/rozmražení Enzymy (narušení buněčné stěny, narušení tkáně) Mechanická dezintegrace (hmoždíř, „vortex“ s pevnými částicemi …)

Odstranění kontaminant RNA RNáza A – štěpí za pyrimidiny Proteiny proteináza K, extrakce fenol/chloroform, vysolení, …

DNA recovery Chrometografické kolony Silika kuličky Srážení alkoholy Chelex – nízká čistota, pro PCR ve forenzní genetice

Specifika manipulace s genomovou DNA Pro zvýšení celistvosti izolované DNA jsou doporučovány špičky s velkým průměrem okolo 3mm (například nůžkami ustřižený konec). Rovněž při centrifugaci dbáme na nízkou akceleraci a deceleraci centrifugy! Celkově s roztokem DNA zacházíme šetrně, bez prudkých pohybů. Celistvost DNA zkontrolujeme elektroforetickou separací na agarosovém gelu. DNA by měla být patrná jako celistvý, vysokomolekulární proužek. Pokud je místo jednolitého proužku patrná “šmouha”, značí to, že DNA byla degradovaná.