Moderní metody buněčné biologie

Slides:



Advertisements
Podobné prezentace
Imobilizace a stabilizace enzymů.
Advertisements

Isolace enzymů.
IZOLACE A CHARAKTERIZACE PROTEINŮ
Kvantitativní RT-PCR Praha
5. DĚLENÍ LÁTEK MEMBRÁNOU
Kapalinová chromatografie v analytické toxikologii Věra Pacáková Univerzita Karlova v Praze, Přírodovědecká fakulta, katedra analytické chemie.
Kapilární elektroforéza v nevodném prostředí - NACE
Chemická stavba buněk Září 2009.
Metabolismus A. Navigace B. Terminologie E. Sacharidy I. Enzymy
Izolace karotenoidních barviv z rostlinného materiálu
Separační metody.
Biochemické metody separace proteinů
Odběr a uchování biologického materiálu pro stanovení mRNA
Izolace RNA z živočišné tkáně
Environmentální chemie I
Transkriptom.
(genové mutace, otcovství, příbuznost orgánů při transplantacích) RNA
Studium aktinu, mikrofilamentární složky cytoskeletu pomocí dvou metod:
Microarrays and chips M .Jurajda.
Marie Černá, Markéta Čimburová, Marianna Romžová
Fázové separace.
Autor: Milan Blaha Konzultant: Prof. MVDr. Jan Motlík, DrSc.
VODNÍ EKOSYSTÉM, VZORKOVÁNÍ VOD JAN TŘÍSKA ÚSBE AV ČR, ČESKÉ BUDĚJOVICE (PŘEHLED LITERATURY)
Radovan Horák, Romana Zaoralová, Jiří Voller
Analýza a separace nukleových kyselin
Dělící techniky nukleových kyselin
Vývoj mikrosatelitních markerů (SSR) KBO/125 Jiří Košnar, katedra botaniky PřF JU, 2012 Kurz byl financován z projektu FRVŠ 1904/2012.
Vyšetření komplementového systému
DNA diagnostika II..
Transformace 1 - KLONOVÁNÍ
Základní struktura živých organismů
Test aktivity lymfocytů
Mária Ol’hová, Veronika Frkalová, Petra Feberová
2014 Výukový materiál GE Tvůrce: Mgr. Šárka Vopěnková Projekt: S anglickým jazykem do dalších předmětů Registrační číslo: CZ.1.07/1.1.36/
Bezpečnost práce při praktických cvičeních z MB
Technologické aspekty čipových technologií Boris Tichý LÉKAŘSKÁ FAKULTA MASARYKOVY UNIVERSITY Interní hematoonkologická klinika LF MU a FN Brno.
Matúš Mihalčin Ayoub Amleh Khaled M. Alhibeedi
HPLC Vysokoúčinná kapalinová chromatografie
Doc. RNDr. Alena Španová, CSc. Doc. Ing. Bohuslav Rittich, CSc.
V praktiku budou řešeny dvě úlohy:
Molekulární biotechnologie č.10a Využití poznatků molekulární biotechnologie. Molekulární diagnostika.
Western blotting Slouží pro detekci proteinů prostřednictvím protilátek. Obvykle následuje po rozdělení polypeptidů v elektrickém poli polyakrylamidovou.
Srážecí metody.
RNA savčí buňka: pg celkové RNA rRNA (28S,18S, 5S) 80-85% tRNA, snRNA 15-20% mRNA 1-5% mRNA molekul/buňku, tj rozdílných transkriptů.
Biotechnologie, technologie budoucnosti Aleš Eichmeier.
PRŮKAZ NUKLEOVÉ KYSELINY Lékařská mikrobiologie – cvičení, jarní semestr 2016 Mikrobiologický ústav LF MU
Enzymová aktivita Kinetika podle Michaelise a Mentenové E + SESE + P Jednotky enzymové aktivity KATAL (kat) 1 katal = 1 mol přeměnéného substrátu (event.
1 Metody molekulární biologie ve forenzní genetice Jana Vlasáková.
Imunochemické metody Metody využívající vazbu mezi antigenem a protilátkou Vytášek 2008.
Environmentální aplikace molekulární biologie
Manipulace s DNA Manipulace s proteiny Analýza genové exprese
Příprava vzorků – odběr vzorků, uchování vzorků a izolace
qRT-PCR Kryostat Mgr. Jiřina Medalová, Ph.D. Mgr. Martina Lánová RNDr. Josef Večeřa, Ph.D. Bc.
4. CENTRIFUGACE Podmínka dělení: l ≥ 1 suspenze  emulze
C7188 Úvod do molekulární medicíny 3/12
Provedení DNA – otisků prstů
Moderní metody v ekotoxikologii Bi5596
Iontová chromatografie
Bi5130 Základy práce s lidskou aDNA
Příprava vzorků – odběr vzorků, uchování vzorků a izolace
Izolace genomové DNA Základní kroky: Biologický materiál:
5. DĚLENÍ LÁTEK MEMBRÁNOU
SDS-PAGE Protokol experimentu
Western blotting Slouží pro detekci proteinů prostřednictvím protilátek. Obvykle následuje po rozdělení polypeptidů v elektrickém poli polyakrylamidovou.
Základy genomiky V. Analýza protein-proteinových interakcí Jan Hejátko
Od DNA k proteinu - v DNA informace – geny – zápis ve formě 4 písmen = nukleotidů = deoxyribóza, fosfátový zbytek, báze (A, T, C, G) - DNA = dvoušroubovice,
Srážecí metody.
Výskyt pesticidů v podzemních vodách ČR
VÁŽENÍ STUDENTI 2. – 5. ROČNÍKU! BUĎTE „IN“!
Transkript prezentace:

Moderní metody buněčné biologie Izolace RNA

komerčně dodávána jako TRI Reagent nebo TRIzol. Extrakce a izolace RNA Klasická metoda: Chomczynski, P. and Sacchi, N. Single-Step Method of RNA Isolation by Acid Guanidinium Thiocyanate- phenol-chloroform extraction. Anal. Biochem. 162, 156-159 (1987). nevýhody – vyžaduje extenzivní používání organických rozpouštědel a je náročná na použití inhiborů RNáz (např. e.g. guanidinium isothiocyanate (GITC)) výhoda - cena komerčně dodávána jako TRI Reagent nebo TRIzol.

Extrakce a izolace RNA Klasická metoda: Metoda je založena na fázové separaci - po centrifugaci vzorku ve směsi vodu nasyceného fenolu, chloroformu a GITC. Po centrifugaci je RNA přítomná ve vodné fázi, zatímco DNA a proteiny jsou soustředěny v interfázi mezi horní vodnou a dolní organickou fází. Po odebrání vodné fáze je získaná RNA precipitována pomocí 2-propanolu nebo ethanolu, vysušena a rozpuštěna v H2O nebo TE pufru..

Důležité si uvědomit: je třeba bránit degradaci RNA prostřednictvím RNáz nedotýkat se vzorků, pracovat v rukavicích používat inhibitory RNáz, např. GITC odstranit kontaminující DNA (RNA)

Metody odstraňující DNA kontaminaci: oligo d(T) metody (použitelné pro eukaryotickou mRNA) využití polyadenylovaného konce eukaryotické mRNA hybridizace oligo d(T) s mRNA separace vázané mRNA (centrifugací, magneticky) DNA mRNA pellet

Metody odstraňující DNA kontaminaci: pomocí DNázy kontaminující DNA je rozložena rDNázou 2. DNáza je odstraněna

Extrakce a izolace RNA Izolace pomocí komerčních kolonových kitů: Buňky jsou lyzovány v roztoku s vysokou koncentrací chaotropních iontů (zároveň okamžitě denaturují RNázy), které napomáhají vazbě RNA na silika membránu. Kontaminující DNA je odstraněna pomocí rekombinantní DNázy aplikované na membránu: membrána je poté, většinou dvoukrokově, promyta pufry, které odstraní soli, metabolity a zbylé buněčné makromolekuly. Čistá RNA je eluována pomcí ultračisté vody bez RNáz nebo TE pufru.

Izolace RNA pomocí kitů

Izolace RNA pomocí kitů

Stanovení koncentrace a čistoty RNA: spektrofotometricky A260 – 1.0 ~ 40 mg/ml A260/A280 ~ 2.0 gelová elektroforéza RNA analyzéry

Degradace RNA na gelové elektroforéze

Nové technologie pro analýzu čistoty a koncentrace NK NanoDrop® ND-1000 UV-Vis Spectrophotometer Small samples: designed for 1 ul samples Dynamic range: measures 2-3700 ng/ul (dsDNA) on a single sample. Full Spectrum (220-750nm) 10 second measurement time No cuvettes or capillaries

Nové technologie pro analýzu čistoty a koncentrace NK Agilent 2100 Bioanalyzer http://www.chem.agilent.com/scripts/generic.asp?lPage=1565&indcol=N&prodcol=Y

úplná anglická verze protokolu: Podrobný popis: protokol pro izolaci celkové RNA z kultivovaných buněk pomocí kitu NucleoSpin®RNA II (cvičení Moderní metody buněčné biologie); úplná anglická verze protokolu: http://www.mn-net.com/Portals/8/attachments/Redakteure_Bio/Protocols/RNA%20and%20mRNA/UM_TotalRNA.pdf