SDS-PAGE Protokol experimentu

Slides:



Advertisements
Podobné prezentace
Kyslík Mgr. Helena Roubalová
Advertisements

Umožňuje rozlišení až proteinů.
Úloha 1. Zkoušení živičných materiálů
Projekt teplo Na fyziku.
Základy laboratorní techniky
Analýza proteinů SDS PAGE elektroforézou
SDS-PAGE (= sodium dodecylsulphate-polyacrylamide gel electrophoresis) - metoda pro separaci proteinů dle velikosti (molekulové hmotnosti)
IZOLACE A CHARAKTERIZACE PROTEINŮ
Vypracovala: Markéta Fialová. Praktická část se konala v Univerzitním kampusu Bohunice. Před ní jsme se však připravovali v teoretické části,
Siločáry elektrického pole
GYMNÁZIUM, VLAŠIM, TYLOVA 271
Test vyšetření plodnosti mužů Male fertility test Miloslava Betková VFN Praha.
Esterifikace Chemie Autor: Ing. Šárka Psíková
Elektrochemická řada napětí kovů
Laboratorní práce č. 2 Destilace Mgr. Helena Roubalová
DNA-Fingerprint1 Testování produktů elektroforézou v agarózovém gelu.
Izolace RNA z živočišné tkáně
Chemické výpočty III.
Příprava peroxidu chromu Gymnázium a Střední odborná škola, Lužická 423, Jaroměř Mgr. Martin Rolek VY_32_INOVACE_8A17.
Termický analyzátor EXSTAR TG/DTA 6200 Katedra anorganické chemie PřF UP v Olomouci Tel.: Pavel Štarha VaV pro.
Elektronová mikroskopie a mikroanalýza-4
Experiment: Test na přítomnost patogenu ve vodě z mytí brambor pomocí PCR.
Obrázek převzat z (prosinec 2006)
Chladnutí vody v různých nádobách
Studium aktinu, mikrofilamentární složky cytoskeletu pomocí dvou metod:
Přírodopis 9 4. hodina Stavba Země
Zpracoval: Ondřej Boček
Marie Černá, Markéta Čimburová, Marianna Romžová
ELISA, určení ideálních koncentrací reaktantů -různé varianty
Teplo ZŠ Velké Březno.
Western blotting slouží pro identifikaci polypeptidů prostřednictvím protilátek obvykle následuje po rozdělení polypeptidů v elektrickém poli polyakrylamidovou.
Elektroforéza K realizaci je nutné mít: Stejnosměrný el. proud
Stanovení původu kontaminace pacienta. Souvislosti Pacient nakažený infekcí byl po operaci hospitalizován. V průběhu hospitalizace absolvoval každý den.
Matúš Mihalčin Ayoub Amleh Khaled M. Alhibeedi
Moderní metody buněčné biologie
V praktiku budou řešeny dvě úlohy:
Western blotting Slouží pro detekci proteinů prostřednictvím protilátek. Obvykle následuje po rozdělení polypeptidů v elektrickém poli polyakrylamidovou.
Metody používané v klinické praxi
Proces bakteriální identifikace Část 1: Příprava API systému.
Ch_051_Sacharidy - monosacharidy Ch_051_Přírodní látky_Sacharidy - monosacharidy Autor: Ing. Mariana Mrázková Škola: Základní škola Slušovice, okres Zlín,
NÁZEV ŠKOLY: ZŠ J. E. Purkyně Libochovice AUTOR: RNDr. Adéla Lipšová NÁZEV: VY_52_INOVACE_33_CHEMICKÉ REAKCE TÉMA: CHEMICKÉ REAKCE ČÍSLO PROJEKTU: CZ.1.07/1.4.00/
NÁZEV ŠKOLY: ZŠ J. E. Purkyně Libochovice AUTOR: RNDr. Adéla Lipšová NÁZEV: VY_52_INOVACE_11_REDOXNÍ REAKCE TÉMA: REDOXNÍ REAKCE ČÍSLO PROJEKTU: CZ.1.07/1.4.00/
Objem kvádru a krychle slovní úlohy 6. třída. Jakou hmotnost má cihlová zeď dlouhá 8 m, široká 2,4 m a tloušťce 0,6 m, jestliže 1m³ má hmotnost 25 q.
Č.projektu : CZ.1.07/1.1.06/ Portál eVIM Archimedův zákon.
Immunoprecipitace Praktická práce – část I.. Protokol k experimentu Protokol.
Č.projektu : CZ.1.07/1.1.06/ Portál eVIM Fotosyntéza.
Zjištění molekulární hmotnosti zeleně fluoreskujícího proteinu (GFP)
POKOŽKA LISTŮ JEDNODĚLOŽNÝCH A DVOUDĚLOŽNÝCH ROSTLIN
Čištění GFP z lyzátu E.coli pomocí sloupcové chromatografie
Elektroforéza v imunologii
Svalová soustava.
Redoxní reakce.
Provedení DNA – otisků prstů
Imunochromatografické stanovení přítomnosti hemoglobinu ve stolici
POŠKOZENÍ DNA VLIVEM IONIZUJÍCÍHO ZÁŘENÍ
Izolace genomové DNA Základní kroky: Biologický materiál:
Specifické tahy na rukou
Výroba a degradace PLA 1.
ELEKTROFORÉZA enzymů a neenzymatických bílkovin
Western blotting Slouží pro detekci proteinů prostřednictvím protilátek. Obvykle následuje po rozdělení polypeptidů v elektrickém poli polyakrylamidovou.
Kalorimetrická rovnice
téma vyjádření Obrázek SmartArts obrázky na červeném pozadí
Elektroforéza K realizaci je nutné mít: Stejnosměrný el. proud
PŘEVODY JEDNOTEK ČASU 60 minut 60 sekund 1 hodina 1 minuta 1 h 1 min
Elektroforéza K realizaci je nutné mít: Stejnosměrný el. proud
Sestavení mikrobiálního palivového článku
Krychle a kvádr - slovní úlohy.
Třída 3.B Laboratorní práce č. 2.
Třída 3.A Laboratorní práce č. 2.
Transkript prezentace:

SDS-PAGE Protokol experimentu 07.06.11

1. Příprava vzorků 1.1 Označte 1,5 ml uzavíratelné mikrozkumavky značkami vzorků ryb. 07.06.11

1. Příprava vzorků 1.2 Do každé označené zkumavky přidejte 250µl Lämmli pufru. 07.06.11

2. Extrackce proteinů 2.1 Pro každý vzorek oddělte kousek rybí svaloviny o hmotnosti cca 1g a vložte ho do označené zkumavky. 07.06.11

2. Extrakce proteinů 2.2 Protřepejte zkumavku krátce na Vortexu, poté inkubujte vzorky 5 minut při pokojové teplotě. 07.06.11

Nepipetujte kousky rybí svaloviny! 2. Extrakce proteinů 2.3 Přeneste 18µl pufru, který obsahuje extrahované proteiny, do označené šroubovací zkumavky. Nepipetujte kousky rybí svaloviny! 07.06.11

2. Extrakce proteinů 2.4 Zahřívejte vzorky ryb a aktinu a myozinu ve vodní lázni na 95°C po dobu 5 min. 95°C 07.06.11

3. Příprava gelu pro elektroforézu 3.1 Rozřízněte podél vyznačené linie a vyjměte gelovou kazetu. 07.06.11

3. Příprava gelu pro elektroforézu 3.2 Odřízněte skalpelem (nebo žiletkou) vyznačenou pásku na kazetě a stáhněte spodní pruh. 07.06.11

4. Příprava elektroforetické komory 4.1 Vložte gelovou kazetu do elektrod. držáku kratší stranou dovnitř. Na druhou stranu stojanu dejte další gelovou nebo prázdnou kazetu, také kratší stranou dovnitř. 4.2 Vložte elektrodový držák do upínacího rámečku, přitlačte dolů a současně upevněte svorkami. 4.3 Vsuňte vnitřní komoru do elektrodové vany. 4.4 Vyjměte hřebínek. 07.06.11

5. Naplnění komory pufrem 5.1 Naplňte vnitřní komoru 140 ml TGS pufru pro elektroforézu. 5.2 Naplňte vnější nádobu 200 ml TGS pufru pro elektroforézu. 07.06.11

6. Naplnění gelových jamek - Pravá a levá jamka zůstávají prázdné. - Zbývající jamky naplňte takto: - 10 µl Kaleidoskop standardy (KS) - 10 µl aktin a myozin standard (AM) - - 10 µl jednotlivých vzorků (Pozor na pořadí vzorků uvedené v protokolu!) -- P1 P2 P3 P4 P5 AM KS -- 07.06.11

7. Průběh elektroforézy Zavřete gelovou komoru a spusťte elektroforézu na 200 V. Ukončete elektroforézu, jakmile bromfenolová modř dosáhne spodního okraje gelu ( trvá. cca 25 min) 07.06.11

8. Sejmutí gelu 8.1 Vyjměte elektrodový rámeček a slijte pufr. (Pufr lze použít opakovaně!). 8.2 Vyjměte gelovou kazetu a položte ji na podložku kratší destičkou nahoru. 07.06.11

8. Sejmutí gelu 8.3 Odřízněte lepící pásku po stranách gelové kazety. 07.06.11

9. Barvení gelu 9.1 Sejměte svrchní vrstvu gelové destičky, spodní vrstvu s gelem vložte do barvící misky s vodou. 9.2 Pod vodou oddělte gel od destičky. 9.3 Vodu nahraďte 70 ml Coomassie- roztoku a nechte barvit po dobu 1 hodiny. 07.06.11

10. Vymývání gelu 10.1 Po jedné hodině slijte barvící roztok. 10.2 Vymyjte gel pod tekoucí vodou (dokud není pozadí gelu bezbarvé). 07.06.11

11. Analýza – odečet gelu 11.1 Zjistěte rozdíly ve svalových proteinech různých druhů ryb. 11.2 Určete molekulovou hmotnost dvou proteinů pomocí kalibrační křivky. 07.06.11