Vývoj NS je formován procesy determinace, diferenciace a indukce Determinace - dána procesem genové exprese Míra determinace různá u různých živočichů Vývoj determinovaný (všichni bezobratlí) Nederminovaný (chordata vč. obratlovců)
Determinovaný vývoj Už ve fázi zygoty jsou jednotlivé bb embrya předurčeny ve svém vývoji Osud buněk je určován genetickými faktory Malá míra flexibility
Vývoj nedeterminovaný Předurčenost buňky k určitému vývoji (daná genomem) je významná, ale Vývoj je ovlivňován vnějšími faktory (chemický gradient, chemické látky uvolňované sousedními bb, specifickými naváděcími bb, růstovými faktory, elektrickým gradientem embrya atd.)
Osud buňky je výsledkem indukce a ne automatickým spuštěním genetického programu, odstranění jedné nebo více bb nemá fatální vliv na osud embrya
Neurulace NS se vyvíjí z ektodermu Indukcí mezodermem Začíná vytvořením Spermanova organizátoru – amphibia Hensenovy zóny – ptáci, savci Produkce růstových faktorů (difusibilní proteiny) indukují neurální diferenciaci a tvorbu nervové rýhy a nervové ploténky, neurální trubice
Buňky z okrajů neurální rýhy se oddělují a tvoří neurální lištu Buňky z rýhy migrují na periferii – periferní orgány dorzální ganglia a ganglia autonomních nervů Ventrálně vzniká chorda Anteriorně – diferenciace – základy mozku
Neurulace schema a foto
Produkce neuronů a glií Zpočátku je N trubice jednovrstevná, později vícevrstevná Dělení probíhá v germinální zóně (vnitřní strana) Během bb dělení jádra složitě migrují DNA syntéza probíhá na vnějším okraji, Dělení na vnitřním Během migrace jsou jádra ovlivňována různými cytoplasmatickými faktory Po několika cyklech dceřinné buňky nejsou schopny dalšího dělení a opouštějí germinální zónu
Migrace Dceřinné bb migrují Neurony se dále nedělí – bb postmitotické Glie se mohou dělit N trubice se stává 3 vrstevnou Ventrikulární zóna – proliferační Šedá hmota – vrstva neuronální prekursorů a migrujících neuronů Bílá hmota – vrstva neuronálních výběžků
Produkce neuronálních a gliových prekurzorů Neuroektoderm S Centrální kanál M Migrující prekurzory amitotické neurony a glie Vnější strana ventrikulární střední okrajová zóna
Migrace neuronů v CNS Mícha Migrující neurony Centrální kanál Pleny Střední Šedá hmota Marginální Bílá hmota Ventrikulární
Migrace v mozkové části 3 vrstevná stra přetrvává v oblasti míchy a prodloužené míchy V mozkové a mozečkové části neurony migrují periferně a tvoří kortikální ploténky Neurony migrují podél radiálních gliových buněk
Migrace neuronů v CNS Mozeček Radiální gliové buňky Migrující neurony Komora Granul. bb Purkyň. bb VZ MZ Budoucí bílá hmota Korová ploténka
Migrace neuronů v CNS Mozek Migrující neurony Komora VZ Střední vrstva MZ Korová ploténka Bílá hmota
Radiální gliové buňky Udržují kontakt s vnitřní a vnější stranou NT po celou dobu vývoje Na migraci neuronů se podílí neznámé transportní bílkoviny Po ukončení migrace neuronů zanikají
Migrace buněk neurální lišty Bez pomoci glivých buněk Migrace řízena atraktivními a repulsivními interakcemi s buněčnými povrchy a komponentami extracelulárního prostoru (adhesivní faktory) V průběhu migrace se neurony dostávají do různých oblastí - indukce
Migrace buněk neurální lišty DR, autonomní ganglia, Schwann.bb, adrenergní chromafinní bb. Posteriorně Epidermis Neurální trubice Dermatomy Sklerotomy Chorda Anteriorně Anteriorní sklerotom Laminin, fibronektin Posteriorní Sklerotom F-spondin
Neurální lišta Naurální trubice Ektoderm Smyslová ganglia Somit Chorda Sympatická ganglia Aorta Nadledvinky Tělní dutina Střevo
Neurony se po migraci dále nedělí Výjimky tvoří – Interneurony bazálních ganglií Granulární bb mozkové kůry Primární aferentní neurony – čichové Postgangliové neurony autonomního Ns Bb nadledvinek, které tvoří A a NA
Mechanismus indukce – vyjádření genotypu U dospělého jedince jsou různé oblasti NS fenotypově odlišné Fenotyp je determinován selektivní expresí genů Během vývoje dochází různými mechanismy indukce k Hierarchicky regulované expresi transkripčních faktorů
Forebrain Midbrain Hindbrain Enterická parasympatická ganglie Sympatická Ganglia a adrenergní dřeň
Některé geny kontrolují rozhodnutí o tvorbě tělních částí - rhombomer V každém segmentu se neuronální bb diferencují ve stejném rytmu Proces diferenciace je specificky modifikován Hox geny – determinují osud neuronů v každém segmentu Vybírají k expresi ty geny, které jsou třeba v daném segmentu
Geny aktivované během ranného vývoje NS Hox geny - osud segmentů Transkripční faktory (Kreisler, Krox-20) Receptor tyrosin kináza (Sek-1, Sek-4,transmembránový protein, ligand = Elf-2)
Hox – homeotické geny Nalezeny u Drosophily (mutace - tykadlo místo nohy) Geny zodpovědné za vznik určité struktury Kontrolují podřízené geny a transkripční faktory Exprese hox genů řízena kyselinou retinovou ze Spermanova organizátoru Systematicky organizovaná citlivost receptorů
Anterio-posteriorní gradient Kyselina retinová
Hox geny – homeotické regulační geny – kyselina retinová (reaguje s receptory v jádrech cílových buněk) Hierarchicky regulovaná exprese transkripčních faktorů
NS obratlovců také diferencován ve směru dorso-ventrálním Indukční signály produkované chordou Produkt „sonic headgehog“ genu difusibilní protein kontroluje hox geny Později proužkem specializovaných gliových buněk bazální ploténky na ventrální straně míchy
Dorzo-ventrální gradient Bazální ploténka Anterior Dorzálně Posterior Chorda Ventrálně Difuzibilní protein Produkovaný Headgehog genem
Anterioposteriorní a dorsomediální gradienty kontrolují transkripční faktoy a determinují regionální identitu CNS
Buněčné linie – vztah mezi narozením neuronů a jejich osudem U obratlovců je obtížné sledovat buněčné linie Techniky vnesení markeru (fluorescenčně označený virus) do prekurzorové bb a sledování výskytu v hotovém NS Vnesení markeru do retiny nově narozené krysy – označené byly neurony i glie Do kůry – klony s virem byly jenom buď v gliích nebo neuronech – diferenciace probíhá dříve
Buněčné linie v savčím CNS Retina Epitel Čočka 4-6 týdnů Injekce retroviru kódující b-galaktosidázu do prekurzorové buňky
Existuje závislost mezi vznikem neuronů a jejich uspořádáním v kůře Injekce radioaktivního thymidinu do dělících se buněk kůry Nejhlouběji jsou ty, co se dřív narodily
Počet buněk v jednotlivých vrstvách kůry po injekci 3H tymidinu 0 60 0 60 0 60 0 60 0 60 0 60 1 2+3 4 5 6 Bílá hmota E30 E33 E39 E42 E48 E56
Zapojení neuronů v jednotlivých vrstvách kůry je ovlivňováno lokálními faktory Transplantace neuronů vyvíjející se zrakové kůry do oblasti somatosensorické vedla k indukci neuronálních fenotypů typických pro somatosensorickou kůru i s propojením neuronů
Laminární determinace v kůře 1 Laminární determinace v kůře 2 3 E29 4 Korová ploténka 5 Vnitřní zóna 6 Ventrikulární zóna Bílá hmota VZ
Laminární determinace v kůře 1 2 P1 3 4 Korová ploténka 5 Vnitřní zóna 6 Ventrikulární zóna Bílá hmota VZ
V dospělém NS může být vývoj pod humorální kontrolou Pěvci – kanáři Samci „high vocal center nucleus“ Zde probíhá turnover neuronů v závislosti na hladině testosteronu Zvýšení hladiny 2x ročně, jaro, podzim Po poklesu kontrolovaný zánik neuronů Samice toto centrum nemají, ale po injekci testosteronu je indukováno
Hormonální regulace vývoje NS Nadřazené vokální centrum „Robust“ jádro v archistiatu Nové neurony v dospělém mozku asimilace do složité architektury substrát pro remodelování chování Hlasivky
Kmenové buňky High vocal centrum ptáků Hipokampus Čichový lalok savců z kmenových buněk vnitřní vrstvy laterálních komor – rychle se dělí a dceřinné bb migrují do čichového epitelu a zabudovávají se do stávajících neuronálních okruhů Možnost diferenciace do Neuronů Oligodendrocytů Astrocytů
Kontrola fenotypu v periferním NS Kuřecí a křepelčí zárodky Pozice v neurální liště předurčuje typ periferního NS a typ vznikajícího zapojení I na expresi genů periferního NS mají vliv regionální faktory
Fenotyp v periferním NS Křepelčí embryo Kuřecí embryo Fenotyp v periferním NS
Křepelčí embryo Kuřecí embryo
Výběr mediátoru cílovou tkání Některé buňky během vývoje syntetizují jiný mediátor než v dospělém zapojení Změna metabolismu je indukována látkami cílové tkáně Potní žlázy, sympatické neurony, norepinephrine – Ach
Hladká svalovina žlaz indukuje Cholinergní diferenciaci sympatických neuronů LIF (leukemia inhibitory faktor) Ciliary neurotrophic factor Cardiotropin – 1 Aktivace Ach syntézy v sympatických neuronech
Růst neuronálních výběžků Na růstovém vrcholu Amoeboidní pohyb – lamelipodia a filopodia Přichycují se k substrátu a orientují růstový vrchol Obsahují vlákna aktinu Filopodia „chutnají“ prostředí a odpovídají na chemické stimuly Short range stimuly na stěnách sousedních bb Long-range stimuly – v ect – přitahují či odpuzují
Růst axonů
Myosin zasouvá mikrotubuly Filopodia v klidu Aktinové monomery Myosin Mikrotubulus Aktinová filamenta Aktinová polymerizace Vysouvání filopodií Myosin posouvá mikrotubuly Mikrotubulus Myosin Aktinová filamenta ATP, Actin-binding-protein Ca, proteinkináza Aktinová vlákna přichycená k podkladu
Naváděcí signály – extracelulární adhesní proteiny Short range Na membrány vázané adhesní molekuly Imunoglobulinové molekuly Např. populární glykoprotein axonálního povrchu TAG1 (Transiently expressed Axonal surface Glykoprotein) Pomáhá řízenému prorůstání neuronů v míše a způsobuje u jistých axonů změnu směru růstu Některé působí prostřednictvím specifických receptorů, jiné spojují podobné struktury na sousedních bb
Adheze často závisí na Ca++ Např. N cadherin – spojení buněk v ect tekutině, plasmě, krvi V tkáňových kulturách stimulují adhezi neuronů k podkladu, navzájem a stimulují růst výběžků A adhezi výběžků do primitivních nervů
Adhezní extracelulární glykoproteiny Laminin, fibronektin, tenascin, trombospondin Spolupracují s imunoglobuliny Specifické kombinace zajistí, že ve vyvíjejícím se embryu určitá skupina vysílá výběžky do patřičné oblasti Adhezivní interakce působí na malou vzdálenost – 1 mm
Adhezivní molekuly Buněčné membrány Transmembránové proteiny nebo asociované glykoproteiny, extracelulární část podobná imunoglobulinům N-CAM (neural cell adhesion molecule) CAM (Ng-CAM, glial cell adhesion molecule) TAG-1, MAG, DCC Homofilické vazby Heterofilické N-CADHERIN (Ca-dependentní buněčná adheze)
Adhezivní molekuly Extracelulární matrix LAMININ, FIBRONECTIN TENASCIN CYTOTAXIN
Hmyzí NS má své dispečery Fascikliny – vyvíjející se nervové pásce určují směr a dávají příkazy „shlukujte se“ „nerozcházejte se! Pionýrské neurony na větší vzdálenosti Některé smyslové neurony diferencují dřív hledají dráhu do příslušných oblastí a slouží jako orientační základna pro později narozené druhy
Navádění axonů na větší vzdálenosti Naváděcí buňky Označují přechodné cíle Většinou nezralé neurony Přechodné synaptické kontakty Po splnění úkolu zanikají
Růst axonů
Chemoorientace Axon se může orientovat v závislosti na cílové tkáni i nezávisle Axony spinálních motoneuronů se orientují na periferii prostřednictvím interakce různých faktorů Adhezní proteiny – krátké vzdálenosti Delší vzdálenosti Netrin – chemický gradient (atrakce) Semaforin – chemický gradient (repulse) Příklad složitosti procesů navigace – navádění komisurálních interneuronů v dorsální části míchy
Chemo-atraktivní interace Long-range Close-range Comisurální neuron Receptor DCC Exprimov V axonech TAG-1 adhezivní molekula Netrin-1 Bazální ploténka NrCAM Adhezivní molekula Jinde a v jiné souvislosti DCC funguje jako buněčná adhezivní molekula
Chemo-repulzní interakce Short-range Long-range Motoneuron Periferie Receptor Robo Slit Netrin-1 Slit Difuzibilní protein
Rozpoznávání cíle Aby NS fungoval jak má a produkoval příslušné chování, musí být spoje specifické Tvorba spojů je geneticky podmíněna a závisí na environmentálních faktorech Neurony se chovají jakoby věděly kam růst Jak poznají cíl?
Zrakový systém obojživelníků a ptáků Gangliové bb retiny prorůstají do tekta Z temporální oblasti retiny do anteriorní Tkáňové kultury Chemické naváděcí signály – EPHRINY EPH Receptory v tektu V retině - naso-temporální gradient receptorů V tektu - antero-posteriorní gradient ephrinů
Specifická inervace Levé tektum Interakce receptor tyrosin kináz (Eph kinázy) a ephrinů - mediují vždy repelenci Levé tektum Ephriny exprimovány na cílových neuronech tekta Eph kinázy exprimovány na axonech ganliových buněk Pravé oko
Retina Tektum Anteriorní (přední) Temporální Posteriorní (zadní) Nazální Gradient Eph receptorů Gradient Ephrinu
Axony gangliových buněk temporární sítnice Posteriorní tektum Posteriorní tektum Eph-receptory Ephrin
Naváděcí signály a receptory Short-range (kontaktní) TAG-1 Slit N-CAM ECM adhezní proteiny Ephriny Long-range (difusibilní) Netrin Semaphorin NrCAM Robo N-CAM Integriny Eph receptory DCC Neuropiliny A R Ca, proteinkinázy modulují
Synaptogeneze na nervosvalové ploténce Embryonální svalové vlákno má embryonální Ach receptory rovnoměrně na povrchu Při prorůstání axonu se uvolňuje spontánně Ach – depolarizační potenciál Po kontaktu se tvoří základ synapse Zvyšuje se uvolňování Ach, synapse se dotvoří během minut a receptory se zahušťují pod synapsí Objevuje se acetylcholinesteráza
Formování synapse nervosvalové spojení Embryonické Ach abjd mRNA Dospělé Ach abde mRNA Agrin motoneuronů Heparan sulfát Proteoglykan Receptory MUSK Retrográdní signály - laminin
Formování synapsí v CNS V CNS na jednom neuronu konverguje mnoho synapsí s různými mediátory I v CNS dochází ke shlukování příslušných receptorů pod příslušnými synapsemi Synaptogeneze a na periferii je shodná
Formování synapsí v CNS
Principy synaptogeneze Neexistují předem daná místa pro tvorbu synapse Po kontaktu axon indukuje změny v postsynaptickém elementu Trofické změny působí anterográdně i retrográdně Významně působí elektrická aktivita Inervace je źpočátku polyneurální, Počet synapsí je následně upravován kompeticí neuronů o trofické faktory cílové tkáně
Kompetitivní interakce během vývoje
Kompetitivní interakce během vývoje Po vzniku polyneurální inervace Některé spoje zanikají Dochází k reorganizaci Nadprodukce spojů a následná řízená smrt je charakteristická pro vývíjející se NS
velikosti inervované cílové tkáně a syntézu proteolytických enzymů Mechanismus, který zajišťuje, aby neuronální vstup odpovídal velikosti inervované cílové tkáně zahrnuje aktivaci genu pro řízený rozpad DNA a syntézu proteolytických enzymů
Neuronální aktivita a eliminace synapsí V procesu eliminace spojů má významnou úlohu neuronální aktivita Stimulace vede k eliminaci neaktivních vláken Stimulované spoje tvoří více větvení než nestimulované
Přirozená smrt neuronů během ontogeneze Programovaná smrt Selekce programu vlivem mimobuněčných faktorů Součást přirozeného vývoje