4. CENTRIFUGACE Podmínka dělení: l ≥ 1 suspenze  emulze

Slides:



Advertisements
Podobné prezentace
Metody dostupné v laboratoři Centra pro výzkum a vývoj FN HK
Advertisements

BIOCHEMIE.
Imobilizace a stabilizace enzymů.
IZOLACE A CHARAKTERIZACE PROTEINŮ
Polovodičové počítače
Teoretická výpočetní chemie
Násobíme . 4 = = . 4 = = . 4 = = . 2 = 9 .
Tuk, Bílkovina, Laktóza, (g/100g, %) Somatické buňky,
Stanovení počtu vybraných indikátorových mikroorganismů v potravinách pomocí automatizované metody TEMPO® Mikrobiologie potravin, IV. ročník Ústav hygieny.
Optické metody Metody využívající lom světla (refraktometrie)
5. DĚLENÍ LÁTEK MEMBRÁNOU
Výuka lékařské chemie pro Zubní lékařství na 1. LF UK v Praze
Kapalinová chromatografie v analytické toxikologii Věra Pacáková Univerzita Karlova v Praze, Přírodovědecká fakulta, katedra analytické chemie.
Zápis čísla v desítkové soustavě
Chemické výpočty – část 2
METROPOLITNÍ PŘENOSOVÝ SYSTÉM
Dielektrická elektrotepelná zařízení
Název materiálu: OPAKOVÁNÍ 1.POLOLETÍ - OTÁZKY
Střední odborné učiliště Liběchov Boží Voda Liběchov Registrační číslo projektu: CZ.1.07/1.5.00/ Šablona: Tlak v kapalinách a plynech.
Cvičná hodnotící prezentace Hodnocení vybraného projektu 1.
Soli Soli jsou iontové sloučeniny vzniklé neutralizační reakcí.
Chemická stavba buněk Září 2009.
HPLC High Performance Liquid Chromatography
VYTRVALOSTNÍ SCHOPNOSTI. VYTRVALOST SCHOPNOST PROVÁDĚT POHYBOVOU ČINNOST PO DLOUHOU DOBU SCHOPNOST ODOLÁVAT ÚNAVĚ PŘEKONÁVAT VZDÁLENOST URČITOU INTENZITOU.
SKUPENSKÉ STAVY HMOTY Teze přednášky.
Chemické rovnováhy ve vodách
Laboratorní pomůcky a zařízení
Biochemické metody separace proteinů
Interpretace výsledků modelových výpočtů
3 senzory - 1 jízda – 3 mapy MSP3 technologie mapování půdních vlastností pro 21. století.
Ústav Organické Technologie 2007
Izolace RNA z živočišné tkáně
Udávání hmotností a počtu částic v chemii
Katedra biologických a biochemických věd FCHT, Univerzita Pardubice
Výukový materiál zpracován v rámci projektu EU peníze školám Registrační číslo projektu: III/2VY_32_inovace_120.
Termický analyzátor EXSTAR TG/DTA 6200 Katedra anorganické chemie PřF UP v Olomouci Tel.: Pavel Štarha VaV pro.
Stanovení bílkovin séra na analyzátorech turbidimetrie, nefelometrie
Vybrané metody ACh SEPARAČNÍ METODY úvod.
Měkké rentgenové záření a jeho uplatnění
Studium aktinu, mikrofilamentární složky cytoskeletu pomocí dvou metod:
MOLEKULOVÁ ABSORPČNÍ SPEKTROFOTOMETRIE v UV a viditelné oblasti spektra 4.
Fázové separace.
Analýza a separace nukleových kyselin
Dělící techniky nukleových kyselin
Transformace 1 - KLONOVÁNÍ
Metody používané v biochemii (centrifugace, elektroforéza, dialýza)
Laboratorní preanalytická fáze
Denzitometrie Reflexní fotometrie
Moderní metody buněčné biologie
Elektronová absorpční spektra
Metody separace proteinů
Srážecí metody.
Laserová difrakce pro měření velikost částic Ing. Jana Kosíková SUPMAT – Podpora vzdělávání pracovníků center pokročilých stavebních materiálů Registrační.
C6200-Biochemické metody 08D_zákalové metody Petr Zbořil.
Enzymová aktivita Kinetika podle Michaelise a Mentenové E + SESE + P Jednotky enzymové aktivity KATAL (kat) 1 katal = 1 mol přeměnéného substrátu (event.
Laboratorní preanalytická fáze příprava analytického vzorku.
Kvalita humusu Definice humusu Synonymum k půdní organické hmotě
Měření schopnosti kvasinek flokulovat Doplnění laboratorního cvičení z Fyziologie bakterií Řešitelé: Kopecká Jana, Sedláček Ivo, Balážová Tereza.
Disperzní systémy.
4. CENTRIFUGACE Podmínka dělení: l ≥ 1 suspenze  emulze
SEPARAČNÍ METODY ÚVOD Význam SM– výskyt studovaných látek ve směsích
Kvalita humusu Rozdělení půdní organické hmoty Humusotvorný materiál
Centrifugace.
Separace molekul nukleových kyselin centrifugací
Izolace genomové DNA Základní kroky: Biologický materiál:
Název školy: Základní škola Karla Klíče Hostinné
5. DĚLENÍ LÁTEK MEMBRÁNOU
Srážecí metody.
Speciální metody Petr Zbořil.
Vážková analýza - gravimetrie
Transkript prezentace:

4. CENTRIFUGACE Podmínka dělení: l ≥ 1 suspenze  emulze  koloidní roztoky (NK, bílkoviny)

Rychlost sedimentující částice v Frikční koeficient Stokesův zákon Relativní odstředivé zrychlení R – násobek g N = r.p.m. sedimentační koef. s [sec] x sedimentační konst. →Extrapolace na C0 →20o C →H2O

Svedbergova jednotka 1S=1x10-13 sec

4.1. METODY 4.1.1. DIFERENCIÁLNÍ CENTRIFUGACE metoda pohyblivého rozhraní Dělení podle S Podmínka : ΔS max.; Smax na dno (≈ t, N) Výhody: Jednoduché Nevýhody: Pouze 1 složka STĚNOVÝ EFEKT – nedokonalé dělení

4.1.2. CENTRIFUGACE V KONCENTRAČNÍM GRADIENTU ZONÁLNÍ Kontinuální Diskontinuální Sacharosa Dextran FICOL ρ ≥ 1,3 g/cm3

4. 1. 2. ZONÁLNÍ CENTRIFUGACE a. RYCHLOSTNÍ b. IZOPYKNICKÁ c 4.1.2. ZONÁLNÍ CENTRIFUGACE a. RYCHLOSTNÍ b. IZOPYKNICKÁ c. IZOPYKNICKÁ ROVNOVÁŽNÁ- automatické vytváření gradientu ( CsCl ρ≤1,9; F3AcOCs ρ≤2,6 g/cm3 ) RYCHLOSTNÍ IZOPYKNICKÁ Výhody Dokonalejší dělení Nevýhody Malé množství Separace zón obtížná (propíchnutí) Stěnový efekt ρ < ρč S ≈ r2 ρ > ρč ρ

Centrifugační zkumavky Skleněné Z umělé hmoty: Ependorfky Zkumavky s víčkem QUICK – SEAL polyallomer tubes

4.2. TYPY ODSTŘEDIVEK

4.2.1. DISKONTINUÁLNÍ ODSTŘEDIVKY s výměnným rotorem a. Se závěsnými kyvetami α = 90o V = 30 ml – 3 l, N = 3 – 10 000 S úhlovým rotorem b. α = 14 -40o c. α = 0o N =33 000 Výhody: Nevýhody: Krátká dráha Zvíření Úzká zóna

Výměnné rotory Beckman

d. se zonálním rotorem Postup Jádro rotoru s přívody Jádro s rameny Stěna rotoru Vrotoru = 0,6 – 1,6 l Vvzorku = 20 – 200 ml 4. Gradient hustoty 5.Podložní roztok – cushion 6.Překrývající roztok – overlay Postup Plnění N = 103 ot/min Dělení centrifugací N = 104 ot/min 3. Vytlačování N = 103 ot/min

Čištění transformační DNA z b.subtilis centrifugací v zonálním rotoru 27 mg surové DNA/15 ml Gradient sacharosy 5-30% Citrátový pufr pH 7,0 Cushion – 50 ml 42% sach. Overlay – 100 ml pufru Plnění - 2 000 ot/min Dělení – 40 000 ot/min 7 hod Jímané frakce 10 ml Bílkoviny + RNA DNA agregáty DNA 2,5 S 26 -35 S

4.2.2. KONTINUÁLNÍ ODSTŘEDIVKY Typ SHARPLES N = 40 000 ot./min Výhoda: Velká kapacita 20 – 50 l/hod. Suspenze i emulze Průmyslové kaly

4.3. POUŽITÍ CENTRIFUGACE Separace (čištění) průmyslové kaly, emulze, Centrifugace – nejčastější metoda, nejdůležitější Separace (čištění) průmyslové kaly, emulze,  bílkoviny, NK, organely, buňky, viry, Diferenciální – počátek separace, zpracování homogenátů tkání, náhrada FILTRACE Zonální – dokonalejší, frakcionace Analýza - M

)

4.4. ANALYTICKÁ ULTRACENTRIFUGACE 20.léta Svedberg a j.: důkaz – makromolekuly ne agregáty, ale spojeny kovalentními vazbami  rozvoj chemie makromolekul 1958 Mathew MESSELSON + Franklin STAHL: důkaz semikonzervativní replikace DNA  rozvoj molekulární biologie Expanze a útlum AU Vzkříšení v 90. letech: kombinace moderních přístrojů a počítačového softwaru pro zpracování dat AU SV – sedimentační rychlost: S a hydrodynamické vlastnosti SE – sedimentační rovnováha: M, Kasociace

Důkaz semikonzervativní replikace DNA 1958 Mathew MESSELSON + Franklin STAHL

4.4.2. ANALYTICKÁ ULTRACENTRIFUGA

Analytická centrifuga BECKMAN –COULTER XL-I 100 000 rpm T = 4 - 40ºC Detekce→ UV, VL absorpce, interference index lomu  Detekce neabsorbujících biomakromolekul (sacharidy) Detekce změn konformace nebo asociace bílkovin vlivem ligandů nebo léčiv Vhodnější pro SV celých buněk – rychlejší akumulace dat

4.4.3. ANALYTICKÁ CENTRIFUGA - DETEKCE Šlíry (index lomu) Interference Fotografická absorbance (Schachman 1959) Fotoelektrická absorbance- současný optický systém

Kyveta pro AU Dráha – 1,5 cm Obsah 20-200 μl c - 0,1mg/ml

4.4.4. ANALYTICKÁ ULTRACENTRIFUGACE -VYUŽITÍ Stanovení M Bez kalibrace (x GPC a ElFo) Široký rozsah: 102 (sacharosa, AA) – 106 (viry, organely) !!! Malé množství (20 – 120 μl) i c (0, 01 – 1 g/l), i vysoká c Stanovení homogenity rychlé, kvantitativní určení distribuce částic, stupeň agregace volně v roztoku, nativní, bez případné interakce s matricí Analýza asociujících systémů – široký rozsah: interakcí jak existují v roztoku (makromolekuly s ionty a malými, solvatace, agregace) M c K (10 – 100 M-1 ) 4. Určení pravděpodobného tvaru (koule x cylinder). Detekce konformačních změn ?

4.4.5. ANALYTICKÁ ULTRACENTRIFUGACE - ZÁVĚR AU je všestranná, přesná metoda pro studium biomakromolekul v roztoku při vybrané T M a S Kasociace Solvatace, agregace Heterogenita roztoku Tvar, změny konformace