Metody histologického studia

Prezentace na téma: "Metody histologického studia"— Transkript prezentace:

1 Metody histologického studia
(biologická technika)

2 1. Histologie Histologie - z řečtiny: histos = tkáň, logos = nauka
- vědní disciplína, která se zabývá studiem mikroskopické struktury živočišných tkání a orgánů mnohobuněčných organismů - předmět studia na lékařských fakultách Zařazení histologie: * biologie * morfologie * histologie * cytologie - nauka o buňce * obecná histologie - nauka o tkáních * speciální histologie (mikroskopická anatomie) * histotechnologie Rozdělení histologie: - obecná - nauka o struktuře základních typů tkání - speciální - studuje mikroskopickou stavbu jednotlivých orgánů

3 Příbuzné a související obory:
buněčná biologie - studuje struktury menší než buňka, hlavně organely histopatologie - mikroskopická struktura nemocných tkání; důležitý nástroj patologické anatomie histochemie - chemické pochody probíhající ve tkáních imunohistochemie - využívá antigeny a protilátky na bližší poznání struktur anatomie - struktura orgánů a orgánových soustav morfologie - studuje celé organismy Využití: v medicíně při zkoumání patologických změn tkáně (zhoubné bujení) pomocí histochemických technik lze prokázat přítomnost látek (např. enzymů) v buňkách a tkáních a lépe tak porozumět chemickým procesům v organismu

4 2. Tkáň soubor morfologicky podobných buněk, které plní určitou funkci
buňky tvořící tkáň mohou stejného typu, nebo existují tkáně tvořené buňkami tvarově i funkčně rozdílnými základní stavební složka živočišného těla Typy tkání: epitelová (krycí) pojivová * vlastní pojivová tkáň * vazivo * kost * chrupavka * tělní tekutiny * krev * míza * tkáňový mok svalová * hladká * příčně pruhovaná epitel kolagenové vazivo měkkýše

5 nervová * neurony * neuroglie tekutá (trofická) * krev * krvomíza
kost krev

6 3. Histologické metody Postup při zhotovení řezových preparátů:
Jen malý počet živočišných tkání a buněk je vhodný pro přímé histologické studium. Aby bylo možné studovat různé tkáně a využít současné rozlišovací schopnosti světel- ných mikroskopů, je nutné zhotovit preparáty, tj. tkáně šetrně a rychle usmrtit, připravit dostatečně tenké řezy a ty obarvit. Postup při zhotovení řezových preparátů: 1. Odběr tkáně 4. Zalití do krájecího prostředí 2. Fixace Krájení 3. Vypírání fixáže 3.1 Fixační činidla - slouží k rychlému usmrcení buněk a tkání - volba závisí na záměru studia, neboť ne všechny fixační látky vhodně fixují různé tkáňové komponenty Fixace - fyzikální (zmrazení při -170°C) FREEZING-DRYING - chemická - těžké kovy (chlorid rtuťnatý, dvojchroman draselný, osmium tetroxid) - aldehydy (formaldehyd, glutaraldehyd) - jiné organické látky (trinitrofenol, kyselina octová, kys. trichlor- octová, etylalkohol, metylalkohol)

7 minerální kyseliny – kys. osmičelá - kys. chromová
Chemická fixace – činidla: minerální kyseliny – kys. osmičelá - kys. chromová soli kovů – dvojchroman draselný - sublimát, chlorid rtuťnatý organické kyseliny – kys. octová ledová - kys. trichloroctová - kys. pikrová organické redukční prostředky – etylalkohol - metylalkohol - formaldehyd

8 Nejpoužívanější fixační tekutiny- pro světelnou mikroskopii
Formaldehyd 4% Bouinova tekutina - trinitrofenol+formol+kys.octová (ledová)+voda Susa - chlorid rtuťnatý+chlorid sodný+kys.trichloroctová+kys.octová (ledová)+formol + voda Zenkerova tekutina - chlorid rtuťnatý+dvojchroman draselný+síran sodný+kys.octová (ledová)+voda Gendreova tekutina - trinitrofenol+formol+kys.octová (ledová)+etylalkohol+voda Metanol - pro elektronovou mikroskopii Glutaraldehyd (1-2,5%) Glutaraldehyd + postfixace osmium tetroxidem Glutaraldehyd + formaldehyd Glutaraldehyd + formaldehyd + postfixace osmium tetroxidem

9 3.2 Vypírání fixáže 3.3 Zalévání
- je vždy nutné po použití většiny fixačních tekutin, protože zbytky fixáže ve tkáních jsou překážkou při dalším zpracování preparátů ( snížení barvitelnosti, ztížení zalévání - objekty fixované směsmi s dvojchromanem draselným se vypírají vodovodní vodou, směsi s kys. pikrovou v 70-80% alkoholu, s kys. trichloroctovou v 96% alkoholu - doba vypírání je předepsaná pro každou fixáž - probíhá zpravidla ve zkumavkách, popř. ve větších kádinkách 3.3 Zalévání - pro zhotovení dostatečně tenkých a kvalitních řezů pro studium je nutné tkáň zalít do média, které ji zpevní a vytvoří homogenní blok vhodný ke krájení - pro světelné mikroskopické studium bývají řezy tlusté µm, pro elektronmikr. účely zpravidla 100 nm a tenčí Používaná média - světelná mikroskopie: - parafin - celloidin (nitroceluloza) - zmrazení a krájení na mikrotomu (méně časté) - elektronová mikroskopie: - epoxidové nebo polyesterové pryskyřice

10 3.4 Krájení na mikrotomech
Mikrotom - jednoduchý přístroj, kde je nůž obvykle veden v rovině proti bloku a blok je po každém řezu posunován šroubem do výšky - nebo je nůž pevný a blok je jednak posunován proti ostří nože do výšky, jednak se pohybuje proti ostří nože Po ukrojení řezu - z parafinového bloku - je tento řez napnut na kapce vody a přilepen na podložní sklo. Celloidinové řezy jsou štětečkem přenášeny do 70% alkoholu, zmrazené řezy do nádobky s destilovanou vodou. K lepení parafinových řezů na podložní skla se nejčastěji užívá bílek - glycerin, někdy želatina nebo syntetická lepidla. Tyto řezy po nalepení a usušení musí být odparafinovány a převedeny zpět do vody. Ve většině případů následuje barvení...

11 mikrotom zn. Leica laserový mikrotom